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原代细胞培养
免疫组化(IHC)

时间:2019-03-08 浏览:671次


免疫组织化学(immunohistochemistryIHC)

免疫组织化学是利用抗原抗体的特异性结合反应来检测和定位组织和细胞中蛋白或其他物质的一门技术,它是免疫学和传统组织化学相结合而形成的。免疫组织化学染色技术不仅有较高的敏感性和特异性,其特点是将形态学改变与功能、代谢变化结合起来,直接在组织切片,细胞涂片或培养细胞爬片上定位一些蛋白质和多肽类物质的存在,并可精确到亚细胞结构水平,结合电子计算机图像分析系统或激光扫描共聚集显微术等技术,对被检物质进行定量分析。

免疫组化步骤

1切片,烤片60 ℃,1h

2脱蜡及复水

二甲苯10min,二甲苯10min100%乙醇5min95%乙醇5min90%乙醇5min85%乙醇5min80%乙醇5min75%乙醇5min60%乙醇5min50%乙醇5min30%乙醇5min,自来水1min,双氧水1min

350mL 30H2O2 450mL蒸馏水,室温10min,蒸馏水洗3次,每次3min

4微波修复

将切片浸入0.01M 枸橼酸缓冲液,微波中最大火力(98-100℃)加热至沸腾,冷却(约5-10min),反复两次;

5将切片自然冷却至室温,PBS 洗涤3次,每次5min

6封闭,5BSA,室温20min,甩去多余液体;

7滴加一抗,37℃,1h,或者4℃过夜;

8PBS洗涤3次,每次3min

9滴加二抗,37℃,15-30min

10PBS洗涤3次,每次3min

11滴加SABC 37℃,30min

12PBS 洗涤3次,每次5min

131mL蒸馏水中分别滴加显色剂,混匀;

14、 DAB显色剂配置好后,滴加于切片,室温,镜下检测反应时间(约5min);

15自来水冲洗干净,过蒸馏水;

16苏木素复染2min ,自来水冲洗;

17脱水

30%乙醇3min50%乙醇3min70%乙醇3min80%乙醇3min90%乙醇3min95%乙醇3min100%乙醇3min,二甲苯20min

18树胶封片,镜检。

免疫组化常见问题分析

1石蜡切片在染色过程中出现脱片现象

(1) 烤片时间不够,或温度不够,可以延长烤片时间和提高烤片温度;

(2) 用含有多聚赖氨酸的玻片,可以购买到或这自己做;

(3) 有些组织本身就容易掉片,如骨组织等,操作时冲PBS 不要直接冲到组织上,冲到组织上方,让它流下冲洗组织;

(4) 用高温修复时,温度骤冷也可能引起。

2边缘效应

(1) 组织边缘与玻片粘贴不牢,边缘组织松脱漂浮在液体中,每次清洗不易将组织下面试剂洗尽所致. 解决办法:制备优质的胶片(APES或多聚赖氨酸),切出尽量薄的组织切片,不厚于4微米,组织的前期处理应规范,尽量避免选用坏死较多的组织;

(2) 切片上滴加的试剂未充分覆盖组织,边缘的试剂容易首先变干,浓度较中心组织高而致染色深。解决办法:试剂要充分覆盖组织,应超出组织边缘2mm。用组化笔画圈时,为了避免油剂的影响,画圈应距组织边缘3-4mm

3产生组织切片非特异性染色

(1) 抗体孵育时间过长、抗体浓度高易增加背景着色。这可通过缩短一抗/ 二抗孵育时间、稀释抗体来控制。这是最重要的一条;

(2) 一抗用多克隆抗体易出现非特异性着色,建议试用单克隆抗体看看;

(3) 内源性过氧化物酶和生物素在肝脏、肾脏等组织含量很高(含血细胞多的组织),需要通过延长灭活时间和增加灭活剂浓度来降低背景染色;

(4) 非特异性组分与抗体结合,这需要通过延长二抗来源的动物免疫血清封闭时间和适当增加浓度来加强封闭效果;

(5) DAB 孵育时间过长或浓度过高;

(6) PBS 冲洗不充分,残留抗体结果增强着色,在一抗、二抗或SP孵育之后的浸洗尤为重要;

(7) 标本染色过程中经常出现干片,这容易增强非特异性着色。

4免疫组化染色呈阴性结果

(1) 抗体浓度和质量问题以及抗体来源选择错误;

(2) 抗原修复不全,对于甲醛固定的组织必须用充分抗原修复来打开抗原表位,以利于与抗体结合; 建议微波修复用高火4*6min试试。有人做过实验,这是最佳的时间和次数。若不行,还可高压修复;

(3) 组织切片本身这种抗原含量低;

(4) 血清封闭时间过长;

(5) DAB 孵育时间过短;

(6) 细胞通透不全,抗体未能充分进入胞内参与反应;

(7) 开始做免疫组化,我建议你一定要首先做个阳性对照片,排除抗体等外的方法问题。

5背景强

(1) 考虑一抗浓度高;

(2) 然后调整DAB 孵育时间;

(3) 也要考虑血清封闭时间是否过短;

(4) 适当增加抗体孵育后的浸洗次数和延长浸洗时间等



          


          


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